DNA 濃度計算機

A260 吸光度、希釈倍率、体積から核酸の濃度と総質量を計算します。

核酸濃度を計算
核酸の種類を選び、分光光度計の測定値と試料の情報を入力してください。

DNA 濃度測定について

核酸は芳香族塩基を持つため、260 ナノメートル付近の紫外光を強く吸収します。分光光度計でこの吸光度を測定し、ベール・ランベルトの法則で濃度と結び付けます。この計算機は二本鎖 DNA、一本鎖 DNA、RNA に使われる一般的な換算係数を適用し、希釈倍率と試料体積を掛けて濃度と回収総質量を示します。 通常、A260 が 1.0 のとき、二本鎖 DNA は 50 マイクログラム毎ミリリットル、一本鎖 DNA は 33 マイクログラム毎ミリリットル、RNA は 40 マイクログラム毎ミリリットルと扱います。マイクログラム毎ミリリットルとナノグラム毎マイクロリットルは数値が等しいため、表示濃度に追加の倍率換算は不要です。希釈して測定した場合は希釈倍率を掛けます。例えば十倍希釈後の A260 が 0.5 の二本鎖 DNA は、元の試料で 250 ナノグラム毎マイクロリットルです。 正確な結果には、適切なブランク補正、清潔な光学面、装置の直線範囲内の測定値が必要です。塩、pH、その他の成分がベースラインに影響するため、試料と同じ緩衝液でブランクを測定してください。試料は穏やかに混ぜ、気泡を避けます。吸光度が高すぎる場合は希釈して再測定し、全工程を含む希釈倍率を入力します。倍率は元の濃度を測定溶液の濃度で割った値で、未希釈なら一です。 A260 だけでは試料の純度を証明できません。タンパク質、フェノール、グアニジニウム、遊離ヌクレオチド、濁りも紫外測定値に影響します。実験室では A260 と A280、A260 と A230 の比を大まかな純度指標として確認することがあります。DNA が低濃度、または夾雑物が疑われる場合、蛍光色素法の方が高い特異性を得られます。換算係数も近似であり、特殊なオリゴヌクレオチド配列には配列固有の吸光係数が必要になることがあります。 総質量は回収量の計算、濃度調整の計画、後続実験に使える量の判断に利用できます。濃度と試料体積の積なので、試料が均一であることを前提とします。シーケンシング、クローニング、トランスフェクション、定量 PCR などの繊細な用途では、測定法の要件に従い、異なる原理の方法で濃度を確認することも検討してください。このツールは迅速な計画と分かりやすい計算を支援しますが、信頼できる定量には装置の品質と試料調製が不可欠です。

DNA 濃度の計算例

標準換算係数を使った吸光度計算の例です。

試料計算結果方法
dsDNA、A260 0.5、希釈倍率 10、体積 20 µL250 ng/µL、総量 5,000 ngdsDNA の係数 50 を使用。
RNA、A260 0.8、希釈倍率 2、体積 50 µL64 ng/µL、総量 3,200 ngRNA の係数 40 を使用。
ssDNA、A260 0.3、希釈倍率 5、体積 30 µL49.5 ng/µL、総量 1,485 ngssDNA の係数 33 を使用。

DNA 濃度の計算方法

  1. 二本鎖 DNA、一本鎖 DNA、RNA から選びます。
  2. 260 ナノメートルで測定し、ブランク補正した吸光度を入力します。
  3. 希釈倍率と元の試料体積をマイクロリットルで入力します。
  4. 「濃度を計算」を押し、濃度と総質量を確認します。

DNA 濃度のよくある質問

DNA と RNA で A260 の係数が異なるのはなぜですか?

構造と平均的な吸光特性が異なるため、同じ吸光度でも質量濃度は同じとは限りません。一般的な係数は、日常測定向けにその差を近似しています。

どの希釈倍率を入力すればよいですか?

元の試料が測定溶液の何倍の濃度かを入力します。試料一部に緩衝液九部を混ぜると十倍希釈になるので、10 を入力します。

ng/µL と µg/mL は数値が同じですか?

はい。分子と分母がともに千倍変わるため、50 ng/µL は 50 µg/mL と同じです。

A260 で DNA と RNA を区別できますか?

いいえ。両方とも 260 ナノメートル付近で吸収し、夾雑物も影響します。組成が重要な場合は、精製の対照試料や選択的な蛍光法を使ってください。

測定値が分光光度計の直線範囲外ならどうしますか?

検証済みの範囲に吸光度が収まるまで希釈して再測定してください。元の濃度を復元できるよう、全工程の希釈倍率を入力します。