DNA 연결 계산기

선택한 삽입체 대 벡터 연결 비율에 맞춰 삽입 DNA 질량과 몰량을 계산합니다.

DNA 연결 반응 설계
벡터 질량과 절편 길이를 입력하고 원하는 몰비를 선택하세요.

DNA 연결 계산 안내

DNA 연결은 DNA 연결효소로 벡터와 삽입체를 잇는 과정이지만, 조립의 성공 여부는 질량만이 아니라 분자 수에 달려 있습니다. 짧은 삽입체는 긴 벡터보다 나노그램당 분자 수가 훨씬 많습니다. 이 계산기는 절편 길이와 선택한 삽입체 대 벡터 몰비로 그 차이를 보정합니다. 벡터 질량에 삽입체 길이를 벡터 길이로 나눈 값을 곱하고 목표 비율을 곱하면, 입력한 벡터 질량에 함께 넣을 삽입체 질량이 나옵니다. 일반적인 점착성 말단 클로닝에서는 삽입체 대 벡터를 삼 대 일로 시작하는 경우가 많습니다. 삽입체 분자가 열린 벡터 분자를 만날 기회가 늘어나기 때문입니다. 평활 말단 연결, 다루기 어려운 삽입체, 특수 키트는 다른 비율이 더 적합할 수 있습니다. 일 대 일은 비교에 유용하며, 비율을 높이면 삽입이 개선되기도 하지만 다중 삽입이나 원치 않는 산물이 생길 수도 있습니다. 연결효소 공급사의 프로토콜과 클로닝 방법의 제약을 따라야 합니다. 피코몰 추정치는 이중 가닥 DNA의 염기쌍당 평균 몰 질량을650그램/몰로 가정합니다. 반응 설계에 편리한 값이지 직접 측정값은 아닙니다. 정확한 절편 농도가 중요하므로 적절한 형광 또는 흡광 측정법을 사용하고 염, 뉴클레오타이드, 오염물의 영향을 고려하세요. 길이는 목표 코딩 서열만이 아니라 실제로 연결되는 산물 전체를 포함해야 합니다. 반응 성능은 말단 호환성, 인산화, 벡터 탈인산화, DNA 순도, 완충액의 신선도, ATP, 연결효소 활성, 온도, 반응 시간에도 좌우됩니다. 문제를 해결할 때는 적절한 양성 대조군, 벡터만 넣은 대조군, 연결효소를 넣지 않은 대조군을 포함하세요. 계산량은 화학양론 설정에 도움이 되지만 형질전환 효율이나 콜로니 품질을 예측하지는 못합니다. 총 DNA가 키트 권장량을 넘으면 몰비를 유지하면서 두 성분을 함께 줄이세요. 귀중한 시료는 인접한 두세 가지 비율을 병렬로 시험하고, 콜로니 수만이 아닌 확인된 재조합 콜로니를 비교하는 것이 좋습니다.

DNA 연결 예시

벡터 및 삽입체몰비필요한 삽입체
50 ng, 5000 bp 벡터; 1000 bp 삽입체3:130.00 ng
100 ng, 4000 bp 벡터; 2000 bp 삽입체1:150.00 ng
25 ng, 3000 bp 벡터; 750 bp 삽입체5:131.25 ng

연결 반응 배합량 계산 방법

  1. 벡터 DNA 질량을 측정하고 나노그램 단위로 입력하세요.
  2. 벡터와 삽입체의 전체 길이를 염기쌍 단위로 입력하세요.
  3. 목표 삽입체 대 벡터 몰비를 선택하세요.
  4. 연결 반응 배합량 계산을 누르고 표시된 양을 실험 프로토콜에 반영하세요.
  5. 총 DNA 양과 반응 부피가 연결효소 제조사 권장사항에 맞는지 확인하세요.

자주 묻는 질문

같은 DNA 질량 대신 몰비를 쓰는 이유는 무엇인가요?

길이가 다른 절편은 질량이 같아도 분자 수가 다릅니다. 몰비는 절편 길이를 고려하므로 의도한 벡터와 삽입체 분자 수를 비교할 수 있습니다.

삽입체 대 벡터 비율은 얼마로 시작하나요?

점착성 말단 연결에서는 3:1 몰비로 시작하는 것이 일반적입니다. 효소 키트, 말단 유형, 클로닝 전략에 따라 최적 비율이 다를 수 있습니다.

피코몰은 어떻게 계산하나요?

이중 가닥 DNA의 염기쌍당 평균 몰 질량을 650그램/몰로 가정합니다. 실제 서열 조성에 따른 차이는 일반적인 반응 설계에서는 작습니다.

삽입체 비율이 높을수록 연결이 잘되나요?

아닙니다. 과도한 삽입체는 연결체, 다중 삽입 또는 비효율적인 반응을 유발할 수 있습니다. 삽입체 질량을 무작정 늘리기보다 적절한 대조군과 함께 인접한 비율을 시험하는 편이 유익합니다.

이 계산기가 연결 프로토콜을 대신할 수 있나요?

아닙니다. DNA 화학양론만 결정합니다. 완충액, ATP, 연결효소, 호환되는 말단, 반응 조건 및 형질전환 절차는 검증된 프로토콜을 따라야 합니다.