DNAライゲーション計算機
指定したインサート対ベクター比から、挿入DNAの質量とモル量を計算します。
DNAライゲーション反応を計画
ベクター質量と断片長を入力し、目的のモル比を選んでください。
DNAライゲーション計算について
DNAライゲーションはDNAリガーゼでベクターとインサートを結合する反応ですが、組み立ての成否を左右するのは質量だけでなく分子数です。短いインサートは、長いベクターよりもナノグラム当たりの分子数が大幅に多くなります。この計算機は断片長と指定したインサート対ベクターのモル比でその差を補正します。ベクター質量にインサート長をベクター長で割った値を掛け、さらに目的の比率を掛けると、入力したベクター量に加えるインサート質量が得られます。
通常の粘着末端クローニングでは、インサート対ベクターを三対一にするのが一般的な出発点です。インサート分子が開いたベクター分子と出会う機会が増えるためです。平滑末端の結合、扱いにくいインサート、専用キットでは別の比率が適することもあります。一対一は比較に役立ち、高い比率は挿入を促す場合がある一方、多重挿入や不要な産物も増やしかねません。リガーゼ供給元の手順とクローニング法の制約に従って設定してください。
ピコモル量の推定には、二本鎖DNAの塩基対当たりの平均モル質量を650グラム毎モルと仮定しています。計画に便利な推定値であり、直接測定した値ではありません。断片濃度は正確であることが重要なので、適切な蛍光法や吸光度法を用い、塩、ヌクレオチド、混入物の影響を考慮してください。断片長には目的のコード配列だけでなく、実際に結合される産物全体を含めます。
反応効率は末端の適合性、リン酸化、ベクターの脱リン酸化、DNA純度、バッファーの鮮度、ATP、リガーゼ活性、温度、反応時間にも左右されます。問題の切り分けには陽性対照、ベクターのみ、リガーゼなしの適切な対照を含めてください。計算量は化学量論の設定には役立ちますが、形質転換効率やコロニーの品質は予測できません。総DNA量がキットの推奨を超える場合は、モル比を保って両成分を減らします。貴重な試料では近い比率を二、三種類並行して試し、コロニー数だけでなく、確認済みの組換えコロニーを比較してください。
DNAライゲーションの計算例
| ベクターとインサート | モル比 | 必要なインサート |
|---|---|---|
| 50 ng、5000 bpのベクター;1000 bpのインサート | 3:1 | 30.00 ng |
| 100 ng、4000 bpのベクター;2000 bpのインサート | 1:1 | 50.00 ng |
| 25 ng、3000 bpのベクター;750 bpのインサート | 5:1 | 31.25 ng |
ライゲーション配合量の計算方法
- ベクターDNAの質量を測定し、ナノグラムで入力します。
- ベクターとインサートの全長を塩基対で入力します。
- 目的のインサート対ベクターのモル比を選びます。
- 「ライゲーションの配合量を計算」を選び、表示された量を実験手順に反映します。
- 総DNA量と反応液量がリガーゼメーカーの推奨範囲内か確認します。
よくある質問
DNAを同じ質量にせずモル比を使うのはなぜですか?
長さが異なる断片は同じ質量でも分子数が異なります。モル比は断片長を考慮するため、ベクターとインサートの目的の分子数を比較できます。
最初はどのインサート対ベクター比がよいですか?
粘着末端ライゲーションでは3:1のモル比が一般的な出発点です。酵素キット、末端の種類、クローニング戦略によって最適値は変わります。
ピコモル量はどのように計算しますか?
二本鎖DNAの塩基対当たり平均モル質量を650グラム毎モルとして推定します。実際の配列組成による差は通常の反応計画ではわずかです。
インサート比を上げれば必ず結合が改善しますか?
いいえ。過剰なインサートはコンカテマー、多重挿入、反応効率の低下を招くことがあります。質量を最大化するより、適切な対照とともに近い比率を試す方が有益です。
この計算機でライゲーション手順を代用できますか?
いいえ。求めるのはDNAの化学量論だけです。バッファー、ATP、リガーゼ、適合する末端、反応条件、形質転換操作は検証済みの手順に従う必要があります。